細菌細胞培養皿（如瓊脂平板培養皿）是微生物學實驗中常用的工具，用于細菌的分離、純化、計數及藥敏試驗等。以下是其使用過程的詳細步驟及注意事項：  

一、使用前準備  

培養皿選擇  

根據實驗需求選擇合適材質（如玻璃或一次性塑料）和尺寸（如90mm、60mm）的培養皿。  

檢查培養皿是否完好無損，避免使用有裂紋或污染的培養皿。  

培養基準備  

瓊脂平板：將滅菌后的瓊脂培養基（如LB瓊脂、血瓊脂）冷卻至50-60℃，倒入無菌培養皿中，厚度約3-4mm。  

凝固：水平放置培養皿，待瓊脂凝固（約30分鐘），避免晃動產生氣泡。  

標記：在培養皿底部用記號筆標注實驗信息（如細菌名稱、日期、操作者等），避免在蓋子上書寫以防混淆。  

無菌環境準備  

在超凈工作臺或生物安全柜中操作，提前開啟紫外燈照射30分鐘滅菌，操作前用75%乙醇擦拭臺面。  

穿戴無菌手套、口罩和實驗服，避免皮膚或衣物接觸培養皿內部。  

二、接種操作  

接種工具準備  

根據接種方法選擇工具：  

涂布法：無菌涂布棒（L形玻璃棒）。  

劃線法：無菌接種環（鎳鉻合金或一次性塑料環）。  

打孔法：無菌打孔器（用于藥敏試驗）。  

接種環/棒需在酒精燈火焰上灼燒至紅熱，待冷卻后使用（避免高溫殺死細菌）。  

接種方法  

涂布法（適用于定量分析）：  

用移液器吸取100μL菌液，均勻滴加在瓊脂表面。  

將無菌涂布棒平放在培養皿蓋上，蘸取少量乙醇后點燃滅菌，冷卻后輕壓菌液并旋轉培養皿，使菌液均勻涂布。  

劃線法（適用于分離單菌落）：  

用接種環蘸取少量菌液，在瓊脂表面劃“Z”形或“S”形線條，每次劃線后灼燒接種環并冷卻，重復操作直至覆蓋整個平板。  

打孔法（藥敏試驗）：  

在瓊脂表面均勻接種細菌后，用打孔器在平板上打孔（直徑約6mm）。  

向孔中加入不同濃度的抗生素溶液，培養后觀察抑菌圈大小。  

封口與培養  

用無菌膜或培養皿蓋密封，避免雜菌污染。  

根據細菌生長需求調整培養條件（如溫度37℃、CO?濃度5%、培養時間18-24小時）。  

需氧菌倒置培養（防止冷凝水滴落污染菌落），厭氧菌使用厭氧袋或罐培養。  

三、觀察與記錄  

菌落觀察  

培養后觀察菌落形態（大小、顏色、形狀、邊緣、透明度等），初步鑒定細菌種類。  

記錄菌落數量（用于計數實驗）或抑菌圈直徑（藥敏試驗）。  

污染檢查  

若培養皿中出現非目標菌落（如霉菌、酵母菌），可能為污染，需重新實驗。  

四、使用后處理  

滅菌處理  

未使用的培養皿：若已開封但未接種，需重新高壓蒸汽滅菌（121℃,15分鐘）后丟棄。  

已接種的培養皿：  

含普通細菌：121℃高壓蒸汽滅菌30分鐘。  

含致病菌或高風險微生物：按生物安全要求進行化學消毒（如含氯消毒劑浸泡）或焚燒處理。  

廢棄物分類  

將滅菌后的培養皿放入醫療廢棄物專用袋，標注“感染性廢棄物”后統一處理。  

五、注意事項  

無菌操作  

整個過程需嚴格無菌，避免說話、咳嗽或快速移動導致空氣流動污染。  

接種環/棒冷卻后接觸菌液，防止高溫殺死細菌。  

培養條件控制  

不同細菌需特定培養條件（如溫度、氣體環境），需提前查閱文獻或標準方法。  

避免頻繁開蓋觀察，防止雜菌污染。  

安全防護  

處理致病菌時需在生物安全二級實驗室（BSL-2）操作，佩戴護目鏡和防護服。  

實驗后用肥皂洗手，避免交叉污染。